DS5000 DNA Marker

产品名称

DS^™5000

货号规格

M1111/60次，M1112/60次×5

产品说明

DS^™5000是由9条双链线状DNA片段混合而成的DNA分子量标准（DNA Marker/ DNA Ladder），适用于确定100 bp至5 kb的线性双链DNA片段大小，指示带为1000 bp，便于电泳后观察。每条带都通过严格的物理定量，可用于测定目的片段的大小和含量。

产品浓度为150 ng/µl。

条带组成（bp）

100、250、500、750、1,000、1,500、2,000、3,000、5,000

建议上样量

3-5 µl/次。可根据上样孔大小选择合适上样量。

DS^TM5000已预混上样缓冲液，可直接进行电泳分析。

建议电泳条件

8 cm  1 %琼脂糖凝胶，

1×TAE，7 V/cm，45 min。

保存条件

常温保存3个月，长期保存请置于-20℃。

各条带含量

指示带     150 ng/5µl

非指示带   75 ng/5µl

●  对于非变性凝胶电泳，Marker是否需要DNA变性?

答：本公司Marker产品中只有Lambda DNA Marker为质粒酶切产物，在电泳上样前如加热处理可获得最佳效果，其余产品均不需点样前加热处理；另外电压太高也会使凝胶过热和DNA变性造成带型异常。

●  当DNA停留在凝胶点样孔处时该怎么办？

答：检查胶浓度是否在适合分离DNA片段的范围，点样孔是否高质，确保电泳的正负极正确，检查电泳缓冲液是否具有缓冲能力，确保DNA样品的纯度，如进行PCR产物的纯化，确保样本中没有或只存在少量的DNA结合蛋白或其他可与DNA结合的化合物。

●  为什么DNA条带不理想？

答：影响电泳条带的因素很多，如凝胶种类或浓度不合适，质量不佳；上样量过多或过少；样本的纯度不高，盐浓度过高；电泳缓冲液缓冲能力不足，有核酸酶污染；电泳条件不正确；染色不充分或不均匀；跑胶后没有及时拍照。

●  为什么定量数据不正确以及如何准确定量样品？

答：样品和Marker的上样条件不同，参考条带不正确，凝胶的不均匀染色或背景过高都会干扰凝胶定量结果。样品DNA和Marker DNA在电泳前选用相同的上样染料处理，调整样品浓度，使其在凝胶中的含量与分子量最接近标准DNA条带，样品DNA和Marker的上样体积尽量接近，样品用1×上样缓冲液稀释；定量时以分子量最接近的标准条带为参照物，分析样品条带的含量；利用凝胶图像分析软件，如SensiAnsys可对DNA进行准确定量，比目测条带方法更精确。

●  为什么在变性聚丙烯酰胺/尿素凝胶里电泳时会出现杂带？

答：一般来说，双链DNA Marker不推荐用于变性电泳，否则会产生非正常带型，即出现所谓的杂带。这种出现异型带的现象，在100 bp以下的条带极易发生。当您的实验不可避免的要使用变性聚丙烯酰胺/尿素凝胶进行电泳时，我们建议，将样品和Marker选用同样的变性上样缓冲液进行变性处理后上样，以消除二级结构。